兔子是一种容易紧张的物种,这也使得麻醉师的压力很大。正确选择术前用药可以使麻醉过程更加平顺。兔子在麻醉中可以使用犬猫所用的监护设备。在麻醉前也应禁食,然而对禁食时间的要求低于成年犬猫,它们的禁食时间与新生或幼年犬猫更加接近。兔子在麻醉中更容易出现低体温;所有进行麻醉的病例都应备好加温设备。建议定时监测体温,因为过度加热很快会使体温过高。
■兔子常因为什么原因而需要被麻醉?
兔进行麻醉一般是处理牙齿问题、眼外伤、泌尿系统结石及进行绝育。兔是一种容易紧张的动物,对紧张的兔而言,一些简单的操作像拍X线片或者经静脉大量采血时反而是先进行麻醉再操作比直接物理保定更安全,兔所感受到的压力更小。常见于麻醉后处理咬伤、骨折整复、脊椎外伤和腹腔探查。
■当保定兔子时需要注意什么?
兔形目动物有高度发达的腰部和后肢肌群,在逃避捕食者时,能迅速爆发出速度,相对于他们的大小,这些肌群比马还要更加更强大有力。抓起或保定兔时,若没有固定住后腿可能使其骨折或腰椎脱臼,造成脊髓损伤甚至瘫痪。兔在物理保定时还易发生体温过高,因它们有浓且密的皮毛且无法有效的通过气喘或出汗调节体温。兔的耳朵大且血管丰富,占总体表面积的12%。这对耳朵参与体温调节,如果保定时盖住耳朵,可能导致体温过高。
■麻醉前应该进行哪些检查?
兔子麻醉前检查和其他哺乳动物一样,一般包括称量准确的体重、体况评分、水合状态、腹部触诊和心肺部听诊。如果情况允许,还应采血做实验室检查,包括:红细胞压积、总蛋白、血糖等麻醉所需的最基本数据。如果有必要可将动物镇静后再采血。
下表列出了兔子正常生理和血液学参数:(图一)
■兔子应在术前禁食多长时间?
兔的禁食时间取决于它的营养状态,一般禁食0-4h。兔常被称为“不呕吐”的物种,因该物种的贲门括约肌高度发达,能防止呕吐或食物反流。兔利用后肠发酵,如禁食时间过长可能会导致消化道停滞。一些资料说,禁食能减少胃肠体积,从而降低在麻醉下对换气量的不利影响,但实际操作中似乎没能产生明显的临床效果。如果兔子能够接受,可以在麻醉前小心冲洗或用棉签拭去口腔内大块的食物残渣。术前不需要禁水。
■兔子需不需要术前用药?
大多数动物(任何物种)在全身麻醉前都应接受术前用药,术前用药会减少动物的恐惧、压力和焦虑感,这点对这些更容易应激的小型哺乳动物而言是至关重要的,因为在院期间它们的应激水平会持续升高。
■肌肉及皮下注射首选的位置是哪里?
兔子的常用注射部位与犬猫非常类似。皮下注射位置,可选肩部和后背松弛的皮肤处。对于肌肉注射位置,腰部肌群是首选。在后肢尾侧注射可能会刺激坐骨神经导致自残行为,兔尤其如此。
■埋置静脉留置针的首选位置是哪里?
可以留置在头静脉、外侧隐静脉、耳缘静脉和颈静脉。雌兔的下巴经常有较大的垂褶导致难以放置留置针。通常使用22-26 g留置针。兔耳缘静脉为首选的长期留置位置。
■如何给兔子插管?
一般而言,合适的气管插管型号应能顺利进入气管,并且能和气管内壁形成良好的密封。大多数的动物都应该进行气管插管;插管有利于气体交换,且麻醉气体不易外泄。必要时,进行了气管插管的动物还能够进行正压通气。兔的嘴开张角度很小,舌头大且厚并与基部连接紧密,气管狭窄。大多数兔子所用的气管插管选择范围为1 mm到3.5 mm。兔气管插管有四种标准技术,三种技术为经口气管插管,最后一种经鼻气管插管。所有类型的插管都可以通过观察插管内的水凝、呼气末二氧化碳读数出现或正压通气时双侧听诊可听及呼吸音来确定已插入气管内。如果两至三次未能成功插管之后就应改用面罩。反复插管可刺激迷走神经,对于那些没有给予术前用药的兔更是如此。掌握兔的气管插管技术需要耐心和实践。在这四种方法中,书中介绍盲探插管技术是最容易学习和进行教学的方法。
■麻醉维持过程中的液速应当是多少?
兔比许多其他哺乳动物需要的液体量更大。正常情况下兔对维持液体的需求范围是40 - 100 ml/kg/d。在麻醉状态下,液速范围是10 - 20 ml/kg/h。在休克或出血的情况下,液速范围是30 – 80 ml/kg(输液时间应超过20 min)。即使液速看起来似乎很高,输液量其实可能非常小,因为动物的体型很小。最好使用注射泵或静脉输液泵,或精确输液器以达到精确输注的目的。
■兔和貂在麻醉时常用到哪些监护设备?
最简短的答案是:和犬猫一样。更长些的答案是:应根据监护仪类型去细分。对于大多数兔子,可以使用脉搏血氧计、二氧化碳监测仪、多普勒血流检测仪 (脉搏和心率监测)、体温监护和心电图。在稍大体型的动物还可以使用有创性(兔)或者无创性(兔和貂)血压监测。但无论使用什么设备,都无法取代监护人员、徒手监护和一个好用的听诊器。
■可以监测这些动物的呼气末二氧化碳吗?
是的!ETCO2监测用在气管插管后的动物上效果很好。ETCO2监测能作为气道阻塞的早期预警,还能监测呼吸频率,评估心输出量及通气程度。不过,主流式二氧化碳监测设备可能给插管末端增加太多的重量,而旁流式二氧化碳监测仪的采样气体流量必须要达到200 ml/min才可以,否则会因为样本气体被稀释而导致读数过低而使结果不准确。有些旁流式二氧化碳监测仪只需要小于50 ml/min的采样气流,如此便能精确监测这些小型动物的ETCO2了。
■需要担心动物的保温问题吗?
由于小型动物表面积与体积比的增加,其低体温的风险也随之上升。它们的体温能够在几分钟内下降好几度。低温可导致麻醉药物清除时间延长、心动过缓、呼吸抑制,使发病率和死亡率上升。可以用软性直肠温度计或食道温度探头监测体温。为维持体温应使用保温设备,如循环水毯、覆盖暖垫或暖空气对流装置。仔细监护它们的外部加温设备确保不会过热,因为这些小动物降温虽快,升温却也迅速,容易出现医源性过度加热。
■应该准备哪些急救药物?
应当备好与其他物种在治疗呼吸或心脏骤停时相同的药物。建立气道和静脉通路,对心脏骤停的病例应立即开始胸外按压。对于任何紧急情况所需准备的药品是一样的:阿托品、肾上腺素、利多卡因及对应的拮抗药物。对于抢救时的药物剂量,如下表。(图二)
■苏醒期的注意事项有哪些?
动物应该被裹在毛巾里,但毛巾不应限制胸部扩张,直到翻正反射恢复,能够自主站立具有良好的平衡。过早松手的话兔可能乱踢或扭动,导致脊椎错位或其他创伤。把动物放置在温暖、安静的环境下对其进行密切监测,但不要过于打扰它们。术后应至少每3 h对心率、呼吸率和体温进行监测。仔细观察并保护留置针,因为大多数兔一旦完全清醒会试图将其拔出。
■非甾体类抗炎药(NSAIDs)是否可用于兔?
在合适的病例中,非甾体抗炎药可以而且应该作为多模式镇痛方案的一部分来使用。兔使用NSAIDs时的注意要点与犬猫是相同的。不应该将非甾体抗炎药用于脱水动物、患有胃肠疾病动物或肝肾功能不全的动物使用。任何接受长期NSAID治疗的兔都需要定期复查血液生化。非甾体类抗炎药的剂量信息如下表:(图三)
■兔麻醉苏醒多久后能进食?
兔是后肠发酵动物,必须有食物不断在胃肠道通过以防止肠梗阻或胃肠道迟缓。由于这些原因,只要兔苏醒后清醒,并且能够稳当地站起来,就应尽快提供食物。
■兔子常因为什么原因而需要被麻醉?
兔进行麻醉一般是处理牙齿问题、眼外伤、泌尿系统结石及进行绝育。兔是一种容易紧张的动物,对紧张的兔而言,一些简单的操作像拍X线片或者经静脉大量采血时反而是先进行麻醉再操作比直接物理保定更安全,兔所感受到的压力更小。常见于麻醉后处理咬伤、骨折整复、脊椎外伤和腹腔探查。
■当保定兔子时需要注意什么?
兔形目动物有高度发达的腰部和后肢肌群,在逃避捕食者时,能迅速爆发出速度,相对于他们的大小,这些肌群比马还要更加更强大有力。抓起或保定兔时,若没有固定住后腿可能使其骨折或腰椎脱臼,造成脊髓损伤甚至瘫痪。兔在物理保定时还易发生体温过高,因它们有浓且密的皮毛且无法有效的通过气喘或出汗调节体温。兔的耳朵大且血管丰富,占总体表面积的12%。这对耳朵参与体温调节,如果保定时盖住耳朵,可能导致体温过高。
■麻醉前应该进行哪些检查?
兔子麻醉前检查和其他哺乳动物一样,一般包括称量准确的体重、体况评分、水合状态、腹部触诊和心肺部听诊。如果情况允许,还应采血做实验室检查,包括:红细胞压积、总蛋白、血糖等麻醉所需的最基本数据。如果有必要可将动物镇静后再采血。
下表列出了兔子正常生理和血液学参数:(图一)
■兔子应在术前禁食多长时间?
兔的禁食时间取决于它的营养状态,一般禁食0-4h。兔常被称为“不呕吐”的物种,因该物种的贲门括约肌高度发达,能防止呕吐或食物反流。兔利用后肠发酵,如禁食时间过长可能会导致消化道停滞。一些资料说,禁食能减少胃肠体积,从而降低在麻醉下对换气量的不利影响,但实际操作中似乎没能产生明显的临床效果。如果兔子能够接受,可以在麻醉前小心冲洗或用棉签拭去口腔内大块的食物残渣。术前不需要禁水。
■兔子需不需要术前用药?
大多数动物(任何物种)在全身麻醉前都应接受术前用药,术前用药会减少动物的恐惧、压力和焦虑感,这点对这些更容易应激的小型哺乳动物而言是至关重要的,因为在院期间它们的应激水平会持续升高。
■肌肉及皮下注射首选的位置是哪里?
兔子的常用注射部位与犬猫非常类似。皮下注射位置,可选肩部和后背松弛的皮肤处。对于肌肉注射位置,腰部肌群是首选。在后肢尾侧注射可能会刺激坐骨神经导致自残行为,兔尤其如此。
■埋置静脉留置针的首选位置是哪里?
可以留置在头静脉、外侧隐静脉、耳缘静脉和颈静脉。雌兔的下巴经常有较大的垂褶导致难以放置留置针。通常使用22-26 g留置针。兔耳缘静脉为首选的长期留置位置。
■如何给兔子插管?
一般而言,合适的气管插管型号应能顺利进入气管,并且能和气管内壁形成良好的密封。大多数的动物都应该进行气管插管;插管有利于气体交换,且麻醉气体不易外泄。必要时,进行了气管插管的动物还能够进行正压通气。兔的嘴开张角度很小,舌头大且厚并与基部连接紧密,气管狭窄。大多数兔子所用的气管插管选择范围为1 mm到3.5 mm。兔气管插管有四种标准技术,三种技术为经口气管插管,最后一种经鼻气管插管。所有类型的插管都可以通过观察插管内的水凝、呼气末二氧化碳读数出现或正压通气时双侧听诊可听及呼吸音来确定已插入气管内。如果两至三次未能成功插管之后就应改用面罩。反复插管可刺激迷走神经,对于那些没有给予术前用药的兔更是如此。掌握兔的气管插管技术需要耐心和实践。在这四种方法中,书中介绍盲探插管技术是最容易学习和进行教学的方法。
■麻醉维持过程中的液速应当是多少?
兔比许多其他哺乳动物需要的液体量更大。正常情况下兔对维持液体的需求范围是40 - 100 ml/kg/d。在麻醉状态下,液速范围是10 - 20 ml/kg/h。在休克或出血的情况下,液速范围是30 – 80 ml/kg(输液时间应超过20 min)。即使液速看起来似乎很高,输液量其实可能非常小,因为动物的体型很小。最好使用注射泵或静脉输液泵,或精确输液器以达到精确输注的目的。
■兔和貂在麻醉时常用到哪些监护设备?
最简短的答案是:和犬猫一样。更长些的答案是:应根据监护仪类型去细分。对于大多数兔子,可以使用脉搏血氧计、二氧化碳监测仪、多普勒血流检测仪 (脉搏和心率监测)、体温监护和心电图。在稍大体型的动物还可以使用有创性(兔)或者无创性(兔和貂)血压监测。但无论使用什么设备,都无法取代监护人员、徒手监护和一个好用的听诊器。
■可以监测这些动物的呼气末二氧化碳吗?
是的!ETCO2监测用在气管插管后的动物上效果很好。ETCO2监测能作为气道阻塞的早期预警,还能监测呼吸频率,评估心输出量及通气程度。不过,主流式二氧化碳监测设备可能给插管末端增加太多的重量,而旁流式二氧化碳监测仪的采样气体流量必须要达到200 ml/min才可以,否则会因为样本气体被稀释而导致读数过低而使结果不准确。有些旁流式二氧化碳监测仪只需要小于50 ml/min的采样气流,如此便能精确监测这些小型动物的ETCO2了。
■需要担心动物的保温问题吗?
由于小型动物表面积与体积比的增加,其低体温的风险也随之上升。它们的体温能够在几分钟内下降好几度。低温可导致麻醉药物清除时间延长、心动过缓、呼吸抑制,使发病率和死亡率上升。可以用软性直肠温度计或食道温度探头监测体温。为维持体温应使用保温设备,如循环水毯、覆盖暖垫或暖空气对流装置。仔细监护它们的外部加温设备确保不会过热,因为这些小动物降温虽快,升温却也迅速,容易出现医源性过度加热。
■应该准备哪些急救药物?
应当备好与其他物种在治疗呼吸或心脏骤停时相同的药物。建立气道和静脉通路,对心脏骤停的病例应立即开始胸外按压。对于任何紧急情况所需准备的药品是一样的:阿托品、肾上腺素、利多卡因及对应的拮抗药物。对于抢救时的药物剂量,如下表。(图二)
■苏醒期的注意事项有哪些?
动物应该被裹在毛巾里,但毛巾不应限制胸部扩张,直到翻正反射恢复,能够自主站立具有良好的平衡。过早松手的话兔可能乱踢或扭动,导致脊椎错位或其他创伤。把动物放置在温暖、安静的环境下对其进行密切监测,但不要过于打扰它们。术后应至少每3 h对心率、呼吸率和体温进行监测。仔细观察并保护留置针,因为大多数兔一旦完全清醒会试图将其拔出。
■非甾体类抗炎药(NSAIDs)是否可用于兔?
在合适的病例中,非甾体抗炎药可以而且应该作为多模式镇痛方案的一部分来使用。兔使用NSAIDs时的注意要点与犬猫是相同的。不应该将非甾体抗炎药用于脱水动物、患有胃肠疾病动物或肝肾功能不全的动物使用。任何接受长期NSAID治疗的兔都需要定期复查血液生化。非甾体类抗炎药的剂量信息如下表:(图三)
■兔麻醉苏醒多久后能进食?
兔是后肠发酵动物,必须有食物不断在胃肠道通过以防止肠梗阻或胃肠道迟缓。由于这些原因,只要兔苏醒后清醒,并且能够稳当地站起来,就应尽快提供食物。